iTSA与LiP-MS:药物靶点筛选的双子星

更多详情请见:LiP-MS药物靶点筛选技术 

在药物研发的复杂过程中,药物靶点的筛选是关键环节之一。化学蛋白质组学技术的出现,为药物靶点筛选提供了强大的工具。作为蛋白质组学的分支之一,化学蛋白质组学旨在深入了解蛋白质在生物体内的作用机制,为疾病诊断、治疗和药物研发提供重要信息。在这一领域,等温热迁移实验(Isothermal Shift Assay, iTSA)和LiP-MS(Limited Proteolysis Mass Spectrometry)技术犹如两颗璀璨的明星,照亮了药物靶点筛选的路径。这两种技术虽然各有特色,但都致力于揭示小分子药物与蛋白质之间的相互作用,以及这些相互作用如何影响蛋白质的结构和功能。在本文中,我们将深入探讨iTSA和LiP-MS技术的关系与区别,以及它们在现代药物研发中的重要应用。

一、等温热迁移实验

iTSA技术的核心原理在于捕捉蛋白质热稳定性的微妙变化。当小分子药物与靶蛋白发生结合时,会显著改变蛋白质的热稳定性,进而导致其在特定温度下的热变性曲线产生相应的改变。与热蛋白组学TPP技术不同,iTSA技术独具特色之处在于,它仅针对目的蛋白选定一种最适温度条件进行检测,以精准评估蛋白质的稳定性。通过细致监测蛋白丰度的变化,那些丰度显著变化的蛋白,便可被识别为与药物直接相互作用的蛋白,从而找到药物结合的靶蛋白,为药物作用机制的研究提供关键线索。

iTSA流程图

实验流程:

1.细胞处理:细胞样本与药物孵育后,在特定温度下进行热处理。

2.蛋白质提取:通过质谱分析上清中的蛋白,比较药物处理组和对照组的数据。

3.数据分析:丰度显著变化的蛋白即为药物直接相互作用的蛋白。

优势:

  • 高通量:能够在全蛋白质组水平上进行筛选。
  • 灵敏度高:能够检测到微弱的蛋白质-小分子相互作用。

局限性:

  • 特异性较低:可能需要后续验证实验来确认靶点。

二、LiP-MS

LiP-MS技术基于有限蛋白水解的原理。小分子药物与蛋白质结合后,会引起蛋白质构象的变化,这种构象变化会影响蛋白酶的切割位点可及性,从而在有限的蛋白酶解过程中产生靶蛋白的特异性片段。通过比较代谢物处理样品与未处理样品中肽段的丰度差异,可以精确识别出与小分子药物结合的蛋白质及其作用位点。

LiP-MS流程图

实验流程

  • 细胞裂解:将细胞裂解以获得蛋白质样本。
  • 小分子药物与裂解物的孵育:将小分子药物与细胞裂解物共同孵育。
  • 有限蛋白酶切:在孵育后的裂解混合物中加入非特异性蛋白酶(如蛋白酶K)进行有限蛋白酶切。
  • 胰蛋白酶消化:使用胰蛋白酶对蛋白质片段进行进一步消化,生成适合定量质谱分析的肽段。
  • 质谱分析:通过LC-MS/MS分析检测肽段的质量和丰度。

优势

  • 高分辨率:能够精确检测小分子与蛋白质的结合位点。
  • 适用样本类型广:适用于多种样本类型,包括蛋白质溶液、组织、细胞、细菌、酵母等。
  • 同时检测蛋白质丰度和结构变化:为研究蛋白质-小分子相互作用提供了全面的视角。
  • 揭示蛋白质在天然状态下的动态构象特征。

局限性:

  • 靶蛋白具有较高的序列覆盖率
  • 蛋白质构象的动态变化可能掩盖或干扰结合位点的识别,影响结合位点的准确定位。

三、iTSA与LiP-MS技术的对比

技术方法

iTSA

LiP-MS

技术原理

基于热蛋白组学技术,通过在特定温度下进行热处理,检测蛋白质的热稳定性变化,从而揭示药物与蛋白质的相互作用。

通过小分子药物与蛋白质的结合引起蛋白质构象的变化,这种构象变化会影响蛋白酶的切割位点可及性,从而在有限的蛋白酶解过程中产生靶蛋白的特异性片段。

样品处理

细胞样本在药物处理后,在特定温度下进行热处理。

将细胞裂解以获得蛋白质样本,然后将小分子药物与细胞裂解物共同孵育。

检测方法

通过质谱分析上清中的蛋白,比较药物处理组和对照组的数据。

在孵育后的裂解混合物中加入非特异性蛋白酶(如蛋白酶K)进行有限蛋白酶切,然后使用胰蛋白酶对蛋白质片段进行进一步消化,生成适合定量质谱分析的肽段。

数据分析

丰度显著变化的蛋白即为药物直接相互作用的蛋白。

通过比较代谢物处理样品与未处理样品中肽段的丰度差异,可以精确识别出与小分子药物结合的蛋白质及其作用位点。

应用场景

主要用于药物靶点发现,通过检测蛋白质热稳定性的变化来鉴定药物的直接靶蛋白。

除了药物靶点发现外,还广泛应用于蛋白质-蛋白质相互作用、翻译后修饰研究、蛋白质折叠动力学研究等领域。

四、总结

在药物靶点筛选领域,等温热迁移实验(iTSA)和LiP-MS技术均为关键工具。iTSA通过监测蛋白质热稳定性的变化来锁定药物靶点,而LiP-MS则凭借对蛋白质构象变化的捕捉来实现靶点识别。二者在药物靶点筛选过程中各具千秋,具体选用哪项技术,需依据实际研究需求及实验条件综合考量。值得注意的是,当将iTSA与LiP-MS联合运用时,二者能够实现优势互补,提供更为全面、精准的药物靶点信息。这有助于深入剖析小分子药物与蛋白质之间错综复杂的作用机制,从而为药物研发进程注入强大动力,提供坚实的支撑。

下载前必看:https://renmaiwang.cn/s/bvbfw Verilog设计_串并转换 / 移位寄存器实现了一种串并转换的功能,其核心原理在于移位寄存器的运用。 这里详细展示了串转并以及并转串两种不同的设计方案。 每一种转换模式都设有专属的使能信号,同时并行输出数据的格式提供了两种选择:最低有效位优先(lsb)和最高有效位优先(msb)。 串并转换技术主要应用于串行传输并行传输这两种数据传输模式之间的相互转换,而移位寄存器是达成这一目标的常用工具,能够支持并行及串行的数据输入输出操作。 这些移位寄存器通常被设定为“串行输入、并行输出”(SIPO)或“并行输入、串行输出”(PISO)两种工作模式。 在串行数据输出的过程中,构成数据和字符的码元会按照既定的时间顺序逐位进行传输。 相比之下,并行数据传输则是在同一时刻将固定数量(普遍为8位或16位等)的数据和字符码元同时发送至接收端。 数据输入通常采用串行格式进行。 一旦数据成功输入寄存器,它便可以在所有输出端同时被读取,或者选择逐位移出。 寄存器中的每个触发器均设计为边沿触发类型,并且所有触发器均以特定的时钟频率协同工作。 对于每一个输入位而言,它需要经过N个时钟周期才能最终在N个输出端呈现,从而完成并行输出。 值得注意的是,在串行加载数据期间,并行输出端的数据状态应保持稳定。 数据输入则采用并行格式。 在将数据写入寄存器的操作过程中,写/移位控制线必须暂时处于非工作状态;而一旦需要执行移位操作,控制线便会变为激活状态,并且寄存器会被锁定以保持当前状态。 只要时钟周期数不超过输入数据串的长度,数据输出端Q将按照预定的顺序逐位读出并行数据,并且必须明确区分最低有效位(LSB)和最高有效位(MSB)。
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