Lonza 原代细胞解决方案(内附目录)

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Lonza Clonetics & Poietics始于1984年,有着30多年的历史,现在可以提供上百种不同类型组织细胞,并且为每一种类型的细胞都优化了最佳的培养基系统以支持细胞在低血清或无血清环境中维持正常的细胞功能。

 

 

 

 

 

细胞系 VS 原代细胞

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原代细胞培养解决方案

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原代细胞

 

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培养基套装

 

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为什么要用Clonetics & Poietics 原代细胞?

 

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✔每一批次都有全面的质量控制

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✔合法的研究用途许可

 

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更多原代细胞及培养基(戳我哦)

 

 

 

内容概要:文章以“智能网页数据标注工具”为例,深入探讨了谷歌浏览器扩展在毕业设计中的实战应用。通过开发具备实体识别、情感分类等功能的浏览器扩展,学生能够融合前端开发、自然语言处理(NLP)、本地存储与模型推理等技术,实现高效的网页数据标注系统。文中详细解析了扩展的技术架构,涵盖Manifest V3配置、内容脚本与Service Worker协作、TensorFlow.js模型在浏览器端的轻量化部署与推理流程,并提供了核心代码实现,包括文本选择、标注工具栏动态生成、高亮显示及模型预测功能。同时展望了多模态标注、主动学习与边缘计算协同等未来发展方向。; 适合人群:具备前端开发基础、熟悉JavaScript和浏览器机制,有一定AI模型应用经验的计算机相关专业本科生或研究生,尤其适合将浏览器扩展与人工智能结合进行毕业设计的学生。; 使用场景及目标:①掌握浏览器扩展开发全流程,理解内容脚本、Service Worker与弹出页的通信机制;②实现在浏览器端运行轻量级AI模型(如NER、情感分析)的技术方案;③构建可用于真实场景的数据标注工具,提升标注效率并探索主动学习、协同标注等智能化功能。; 阅读建议:建议结合代码实例搭建开发环境,逐步实现标注功能并集成本地模型推理。重点关注模型轻量化、内存管理与DOM操作的稳定性,在实践中理解浏览器扩展的安全机制与性能优化策略。
基于Gin+GORM+Casbin+Vue.js的权限管理系统是一个采用前后端分离架构的企业级权限管理解决方案,专为软件工程和计算机科学专业的毕业设计项目开发。该系统基于Go语言构建后端服务,结合Vue.js前端框架,实现了完整的权限控制和管理功能,适用于各类需要精细化权限管理的应用场景。 系统后端采用Gin作为Web框架,提供高性能的HTTP服务;使用GORM作为ORM框架,简化数据库操作;集成Casbin实现灵活的权限控制模型。前端基于vue-element-admin模板开发,提供现代化的用户界面和交互体验。系统采用分层架构和模块化设计,确保代码的可维护性和可扩展性。 主要功能包括用户管理、角色管理、权限管理、菜单管理、操作日志等核心模块。用户管理模块支持用户信息的增删改查和状态管理;角色管理模块允许定义不同角色并分配相应权限;权限管理模块基于Casbin实现细粒度的访问控制;菜单管理模块动态生成前端导航菜单;操作日志模块记录系统关键操作,便于审计和追踪。 技术栈方面,后端使用Go语言开发,结合Gin、GORM、Casbin等成熟框架;前端使用Vue.js、Element UI等现代前端技术;数据库支持MySQL、PostgreSQL等主流关系型数据库;采用RESTful API设计规范,确保前后端通信的标准化。系统还应用了单例模式、工厂模式、依赖注入等设计模式,提升代码质量和可测试性。 该权限管理系统适用于企业管理系统、内部办公平台、多租户SaaS应用等需要复杂权限控制的场景。作为毕业设计项目,它提供了完整的源码和论文文档,帮助学生深入理解前后端分离架构、权限控制原理、现代Web开发技术等关键知识点。系统设计规范,代码结构清晰,注释完整,非常适合作为计算机相关专业的毕业设计参考或实际项目开发的基础框架。 资源包含完整的系统源码、数据库设计文档、部署说明和毕
<think>好的,用户现在问的是能否将HCMEC/D3细胞的培养基从原来的EGM-2 MV改为ECGM。首先,我需要回顾之前的对话,之前用户询问的是流式细胞周期分析检测细胞衰老的实验方案,其中提到HCMEC/D3细胞使用的是EGM-2 MV培养基。现在用户可能想换培养基,可能出于成本、实验需求变化或者其他原因。 首先,我需要确认ECGM是什么培养基。EGM-2 MV是Lonza公司的内皮细胞培养基,专门为微血管内皮细胞设计,含有生长因子如VEGF、EGF、FGF等,以及血清和其他补充成分。而ECGM可能指的是另一种内皮细胞培养基,比如PromoCell的Endothelial Cell Growth Medium,或者不同公司的类似产品。用户需要明确ECGM的具体成分和供应商,因为不同品牌的培养基配方可能差异较大。 接下来,要考虑更换培养基对HCMEC/D3细胞的影响。HCMEC/D3是脑微血管内皮细胞系,对培养基的要求较高。如果ECGM是专门为类似细胞设计的,可能可以替代,但需要验证。如果ECGM缺少某些关键成分,比如特定的生长因子,可能导致细胞生长缓慢、形态改变甚至死亡。 用户可能没有说明换培养基的原因,可能是成本考虑,或者ECGM更容易获取,或者他们想尝试不同的培养基以优化实验条件。我需要建议用户先查阅文献,看看是否有使用ECGM培养HCMEC/D3的先例,或者联系培养基供应商获取技术资料,确认是否适用于该细胞系。 另外,用户之前进行的是细胞衰老相关的流式检测,更换培养基可能会影响细胞的生长状态和周期分布,进而影响实验结果。因此,在更换培养基后,需要重新优化实验条件,并进行严格的对照实验,确保结果的可靠性。 还需要提醒用户,更换培养基时应该逐步过渡,比如先混合两种培养基,逐渐增加ECGM的比例,观察细胞状态的变化。同时,关键是要监测细胞的增殖率、形态、以及特定标记物的表达(如CD31、VE-cadherin等内皮细胞标记),确保细胞特性没有发生改变。 此外,如果用户已经用EGM-2 MV进行了前期实验,突然更换培养基可能会导致数据不一致,影响实验的可重复性。因此,建议在更换前做好充分的预实验和验证,包括生长曲线分析、细胞周期基线测定等。 最后,需要总结更换培养基的可行性步骤,包括成分对比、预实验设计、逐步过渡方法以及验证指标,帮助用户系统评估是否可行,并避免潜在的实验风险。</think>--- ### **HCMEC/D3细胞更换ECGM培养基可行性分析** --- #### **一、基础信息对比** | 参数 | EGM-2 MV (Lonza) | ECGM (典型配方) | |--------------------|--------------------------------------|----------------------------------| | **适用细胞** | 微血管内皮细胞(包括HCMEC/D3) | 通用内皮细胞 | | **基础培养基** | MCDB 131 | M199/DMEM/F12混合基 | | **关键添加物** | • 5% FBS<br>• hEGF/hVEGF/hFGF<br>• 氢化可的松/抗坏血酸 | • 2-10% FBS<br>• ECGF提取物<br>• 肝素 | | **特殊成分** | 丁酰环腺苷酸(促进屏障功能) | 通常不含特异性屏障功能增强剂 | --- #### **二、可行性评估要点** **1. 细胞功能匹配性** - **屏障功能**:EGM-2 MV含0.5mM 丁酰环腺苷酸(关键跨内皮电阻维持剂),ECGM通常不含此成分 - **增殖需求**:EGM-2 MV含5% FBS + 生长因子三连(hEGF 10ng/mL, hVEGF 0.5ng/mL, hFGF 1ng/mL),ECGM的ECGF提取物成分不稳定 **2. 文献支持度** HCMEC/D3原始文献(*J Cell Physiol* 2005, 204:166) 明确使用EGM-2 MV 使用ECGM的报告仅见于部分大鼠肺微血管内皮细胞研究(*Am J Physiol Lung* 2018) **3. 预实验设计建议** ```markdown 1) 梯度替换:按25%-50%-75%-100%比例逐步替换ECGM 2) 监测指标: • 24h贴壁率(应>90%) • 72h增殖曲线(CCK-8检测) • TEER值(屏障功能金标准) 3) 功能验证: • CD31/PECAM-1表达流式检测 • DiI-Ac-LDL吞噬实验(内皮特性验证) ``` --- #### **三、关键风险与解决方案** | 风险点 | 解决方案 | 检测频率 | |---------------------|-----------------------------------|-------------------| | 细胞去分化 | 添加0.5mM 丁酰环腺苷酸(额外补充)| 每代次免疫荧光检测| | 增殖速率下降 | 补充5ng/mL重组hFGF-basic | 每日细胞计数 | | 屏障功能丧失 | Transwell体系持续监测TEER值 | 每次传代后检测 | --- #### **四、成本效益分析** | 项目 | EGM-2 MV | ECGM + 补充剂 | |----------------|-----------------|-------------------| | 单升成本 | ~$300 | ~$180 + $50补充剂 | | 细胞传代间隔 | 3-4天 | 可能延长至5-6天 | | 实验一致性 | 高(标准化) | 需严格质控 | > **注**:若长期使用,ECGM方案可节省约30%成本,但需增加15%质量控制工作量 --- #### **五、替代方案推荐** 1. **混合培养基**: $$ \text{ECGM}:\text{EGM-2 MV}=1:1 \quad (\text{兼顾成本与特性}) $$ 2. **定制培养基**: 在ECGM基础上添加: - 0.5mM 丁酰环腺苷酸 - 10ng/mL hVEGF - 1%胰岛素-转铁蛋白-硒(ITS) --- #### **六、实施步骤** 1. **小试验证**:用6孔板同步培养3组(EGM-2 MV/ECGM/混合培养基) 2. **关键时间点**: - 第3代:检测增殖与分化标记 - 第5代:全基因组表达谱抽样检测 3. **功能测试**:在目标培养基中重复衰老诱导实验,对比流式细胞周期结果差异 --- **结论**:在严格质控和补充关键成分的前提下,ECGM可用于HCMEC/D3培养,但进行衰老相关研究时需注意: $$ \text{G0/G1期基线比例可能因培养基差异波动} \pm 5\% $$ 建议保留EGM-2 MV作为对照组培养基以确保实验可比性。
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