单细胞分析报错-不能用所有基因来scale数据

不能用所有基因来scale数据

> pbmc_harmony196 <- NormalizeData(harmony196,normalization.method = "LogNormalize",scale.factor = 10000, verbose = F) 
> pbmc_harmony196 <- FindVariableFeatures(pbmc_harmony196, selection.method = "vst", nfeatures = 2000, verbose = F)
Warning messages:
1: In simpleLoess(y, x, w, span, degree = degree, parametric = parametric,  :
  pseudoinverse used at -2.2095
2: In simpleLoess(y, x, w, span, degree = degree, parametric = parametric,  :
  neighborhood radius 0.49905
3: In simpleLoess(y, x, w, span, degree = degree, parametric = parametric,  :
  reciprocal condition number  7.34e-16
4: In simpleLoess(y, x, w, span, degree = degree, parametric = parametric,  :
  There are other near singularities as well. 0.090619
> all.genes <- rownames(pbmc_harmony196)
> pbmc_harmony196 <- ScaleData(pbmc_harmony196, features = all.genes, verbose = F) 
Error: cannot allocate vector of size 457.0 Gb
> pbmc_harmony196 <- RunPCA(pbmc_harmony196,features = VariableFeatures(object = pbmc_harmony196),  npcs = 30, verbose = F) 
Warning in PrepDR5(object = object, features = features, layer = layer,  :
  The following features were not available: DENND4B, ATP6V0E1, STARD7, SLC39A1, BOD1, PPARA, COPA, TSHZ1, ELAVL1, PHKG2, MLX, GCLC, CRTC2, KIF5B, PSMD4, HSD17B7, SAT1, PPP6R3, BAG6, ZBTB24, TRIM69, XPOT, DBP, IGSF8, COPZ1, TPM2, EZH1, TNFAIP1, EDEM2, ABT1, MTO1, TFPT, IFT20, IRF7, NARF, OXSM, MGST3, AK9, TRAF3IP2, ANKRD13A, INPPL1, CCDC137, ACTB, MMS19, SLC12A9, TMEM127, BLZF1, TMEM191C, MAD2L1BP, PPP1R14A, NPC2, SPAST, UCKL1, CUL9, HAX1, PPIB, STX8, CHMP2B, ASMTL, GAPDH, ILF3, HIF1AN, ALDH2, RAPGEF1, CDIPT, UBE4B, SH3KBP1, DOCK10, BROX, GSTP1, SLC7A7, KMT2D, UFL1, BEX4, CAPN7, CTNNBIP1, PURA, KLF16, UBE2V2, SPTY2D1, NFKBIA, UBL4A, BCL11A, UBN2, RAB6A, CLEC12A, RAB2A, DUSP1, EXOC5, MAP2K1, FGR, C19orf53, KCTD12, MT-ND2, VPS37A, DUT, OTUD5, LINC00667, KLHL24, UTP15, WASL, MED28, CCDC77, SON, PLEK, ZZEF1, MT-ATP8, TRIM22, SF3A3, ARID1A, GMPR, P4HTM, POU2F2, IGFBP7, CEBPB, C19orf38, PHACTR4, EXOC7, SSBP4, SSR3, ZC3H3, UBE2S, MDM4, PRPF18, ORC2, PTPRE, ZNF487, FCGR2B, MGST1, SLC25A1, PRDX6, [... truncated]
Warning message:
In LayerData.Assay5(object = object, layer = layer) :
  multiple layers are identified by scale.data.70 scale.data.71 scale.data.72 scale.data.73 scale.data.74 scale.data.75 scale.data.76 scale.data.77 scale.data.78 scale.data.79 scale.data.80 scale.data.81 scale.data.82
 only the first layer is used
> pbmc_harmony196 <- RunUMAP(pbmc_harmony196, reduction = "pca", dims = 1:30, verbose = F)
Warning: The default method for RunUMAP has changed from calling Python UMAP via reticulate to the R-native UWOT using the cosine metric
To use Python UMAP via reticulate, set umap.method to 'umap-learn' and metric to 'correlation'
This message will be shown once per session
Found more than one class "dist" in cache; using the first, from namespace 'spam'
Also defined by ‘BiocGenerics’
Found more than one class "dist" in cache; using the first, from namespace 'spam'
Also defined by ‘BiocGenerics’
> saveRDS(pbmc_harmony196, file = "harmony198/2/pbmc_harmony196.rds")
> png("1.png")
options(repr.plot.height = 5, repr.plot.width = 12) #调大小
DimPlot(pbmc_harmony196, reduction = "umap",group.by = "dataset",raster=FALSE) +plot_annotation(title = "Harmony196 before integration")   #UMAP聚类-dataset分组  umap_naive是早期版本
dev.off()
Warning message:
Removed 1107476 rows containing missing values (`geom_point()`). 
null device 
          1 
> png("1.png")
VlnPlot(object =pbmc_harmony196, features = "PC_1", pt.size = 0, group.by = "dataset",raster=FALSE)  #PCA聚类-dataset分组-Vln。其他参 数:split.by="", pt.size = .1 图上显示细胞
dev.off()
Error in if (all(data[, feature] == data[, feature][1])) { : 
  missing value where TRUE/FALSE needed
In addition: Warning message:
Removing 1107476 cells missing data for vars requested 
> png("1.png")
DimPlot(object =pbmc_harmony196, reduction = "pca", pt.size = .1, group.by = "dataset",raster=FALSE)  #PCA聚类-dataset分组-Dim 
dev.off()
Warning message:
Removed 1107476 rows containing missing values (`geom_point()`). 
png 
  2 
> png("1.png")
VlnPlot(object =pbmc_harmony196, features = "PC_1", pt.size = 0, group.by = "dataset",raster=FALSE)  #PCA聚类-dataset分组-Vln。其他参 数:split.by="", pt.size = .1 图上显示细胞
dev.off()
Error in if (all(data[, feature] == data[, feature][1])) { : 
  missing value where TRUE/FALSE needed
In addition: Warning message:
Removing 1107476 cells missing data for vars requested 

<think>好的,我现在需要解决用户在使用doubletFinder时遇到的错误:“Error in xtfrm.data.frame(x) : cannot xtfrm data frames”。首先,我需要理解这个错误的原因。根据用户提供的引用[^1],这个错误通常发生在尝试对数据框(data.frame)进行排序或转换时,而数据框可能包含非数值型或不支持排序的列。 接下来,我应该考虑用户可能的数据输入问题。用户提到他们使用了interval_estimated(df[3]),但出现了类型转换的错误,这可能是因为数据框中的某一列是列表(list)类型而非向量,导致无法转换为double类型。类似地,在doubletFinder中,输入的数据结构可能不符合要求,比如需要的是矩阵或数据框,但实际输入的数据结构有问题。 我需要回忆doubletFinder的输入要求。通常,单细胞分析工具如doubletFinder需要输入的是一个单细胞对象,比如Seurat对象。用户可能在将数据传递给doubletFinder时,没有正确提取或处理数据,例如可能传递了数据框而不是所需的矩阵或表达式数据。此外,数据中如果有非数值型数据(如字符或因子),在排序或计算时也会导致错误。 解决方案可能包括以下几个步骤:首先检查输入数据类型,确保是矩阵或数值型数据框;其次,排除非数值列;再者,正确转换数据结构,例如使用as.matrix();最后,检查数据框的行名和列名是否正确设置,避免出现重复或非法的名称。 另外,用户提到的引用[^3]中关于Vue的警告,虽然不直接相关,但提示了数据初始化的必要性,可能需要确保数据不为NULL,而是初始化为空结构,如空列表或矩阵。这可能类比到R中,需要确保传递给函数的数据不为空或结构正确。 还需要考虑用户是否按照doubletFinder的要求正确预处理数据,例如标准化、过滤低质量细胞等步骤。如果预处理步骤有误,也可能导致后续函数出错。 可能的验证步骤包括:使用class()函数检查输入数据的类型,查看是否有非数值列,尝试将数据转换为矩阵,并再次运行函数。此外,检查官方文档或社区讨论,看看是否有其他用户遇到类似问题及其解决方法。 总结,可能的问题点包括输入数据不是数值矩阵、存在非数值列、数据结构不正确(如数据框中的列表列)等。解决方案应围绕检查和修正这些方面展开。</think>### 解决方案:doubletFinder出现`Error in xtfrm.data.frame(x)`错误的处理方法 #### 1. **检查输入数据类型** - **问题根源**:`doubletFinder`要求输入为**数值型矩阵**(如基因表达矩阵),而非普通数据框或包含非数值列的混合类型数据[^1][^2]。 - **验证方法**:运行`class(your_data)`确认数据类型: ```r # 正确类型应为matrix或dgCMatrix(稀疏矩阵) class(pbmc@assays$RNA@data) ``` - **修复方法**:若输入为数据框,转换为矩阵: ```r your_matrix <- as.matrix(your_data_frame) ``` #### 2. **排除非数值列** - **问题根源**:数据框中的字符型列(如基因名、细胞ID)会导致排序或计算失败。 - **修复方法**:仅保留数值列,或确保输入矩阵不包含元数据: ```r # 假设数据存储在Seurat对象中 expression_matrix <- GetAssayData(object = pbmc, slot = "counts") # 获取数值矩阵 ``` #### 3. **检查数据框行/列名合法性** - **问题根源**:重复的行名或特殊字符(如空格、`-`)会干扰排序操作。 - **修复方法**:使用`make.names()`规范化行名: ```r rownames(your_matrix) <- make.names(rownames(your_matrix), unique = TRUE) ``` #### 4. **正确调用doubletFinder参数** - **关键参数**:确保`seurat`参数传递的是Seurat对象,且已正确预处理(标准化、PCA降维): ```r # 示例标准流程 pbmc <- NormalizeData(pbmc) pbmc <- FindVariableFeatures(pbmc) pbmc <- ScaleData(pbmc) pbmc <- RunPCA(pbmc) pbmc <- doubletFinder(..., seurat = pbmc) # 传递完整的Seurat对象 ``` #### 5. **初始化空数据兜底** - **问题扩展**:类似引用[^3]中Vue的`data`初始化问题,R中也需要确保输入不为`NULL`: ```r if (is.null(your_matrix)) your_matrix <- matrix(numeric(0), nrow=0, ncol=0) # 初始化空矩阵 ``` --- ### 验证步骤 1. **逐步调试**:使用`str(your_data)`检查数据结构,确认无列表列或字符列。 2. **最小化测试**:用`head(your_data[, 1:5])`查看前5列数据类型。 3. **官方示例对比**:参考[doubletFinder官方文档](https://github.com/chris-mcginnis-ucsf/DoubletFinder)验证输入格式。 ---
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