NCycDB数据库使用(二):丰度问题

NCycDB这个数据库我认为比别的数据库方便的就是可以直接得到丰度,那这个数据库进行丰度计算的原理是什么?

这个代码的运行原理是:

1、代码详解

这段代码是一个用于通过 BLASTDIAMONDUSEARCH 对基因组数据进行比对,并根据比对结果计算基因丰度并进行随机抽样的 Perl 脚本。下面是对代码的详细分析:

1.1. 输入参数处理

通过 Getopt::Long 获取用户输入的命令行参数,支持以下参数:

  • -d :指定序列文件所在目录。
  • -m :指定使用的比对工具(diamondusearchblast)。
  • -f :指定序列文件的类型(支持 .fastq.fastq.gz.fasta.fasta.gz 等格式)。
  • -s :指定序列类型(prot 表示蛋白质,nucl 表示核酸)。
  • -si :指定样本信息文件,该文件包含每个样本的序列数量。
  • -rs :指定随机抽样的大小(默认为最小的样本大小)。
  • -o :指定输出文件路径,输出文件包含功能基因的丰度。

1.2. 比对工具选择

根据输入的比对工具(diamondusearchblast),代码分别进行处理:

  • DIAMOND:如果选择了 diamond,它会首先创建数据库(使用 diamond makedb),然后使用 blastxblastp 对所有的序列文件进行比对。
  • USEARCH:如果选择了 usearch,它使用 usearch_global 进行序列比对,并输出到指定文件。
  • BLAST:如果选择了 blast,它使用 blastall 进行比对,并生成输出文件。

1.3. 基因标识映射 (id2gene.map)

使用一个映射文件(data/id2gene.map.2019Jul)将比对结果中的基因ID转换为基因名称。这些基因ID和基因名称通过映射表进行关联,并存储在 %id2gene 哈希表中。

1.4. 计算丰度

根据比对结果计算基因丰度:

  • 对每个比对文件(如 diamond 输出文件),逐行读取比对结果。
  • 比对结果的第一列是查询序列ID,第二列是目标数据库中的ID,第三列是比对的得分等信息。
  • 通过映射表 %id2gene 将目标ID转换为基因名称,并记录每个样本的基因出现次数

1.5. 样本信息处理

通过读取样本信息文件(sampleinfo),获取每个样本的序列数,并存储在 %size 哈希表中。然后根据最小样本数量或用户指定的随机抽样数量进行抽样

如果指定了随机抽样大小(-rs),脚本会根据每个样本的大小(样本中序列的数量)进行随机抽样:

  • 每个样本的序列会随机抽取 rs 个序列(默认情况下 rs 是最小样本的序列数)。
  • 随机抽样后,丰度值会根据被抽中的序列数进行调整。

具体的抽样过程在 RandomSampling 函数中实现:

my @array = shuffle( 1 .. $size{$sample} );
@array = @array[ 0 .. $rs - 1 ];  # 保留抽取的部分
@array = grep { $_ <= $sum{$sample} } @array;  # 根据丰度进行筛选

1.6. 随机抽样 (RandomSampling)

RandomSampling 子程序中:

  • 使用 List::Util 模块的 shuffle 函数对每个样本的序列进行随机抽样。
  • 抽样的大小由用户指定,默认为样本中最小的序列数。
  • 对每个基因,计算其在抽样后的丰度。

1.7. 输出功能基因丰度

最终,脚本会将每个基因的丰度信息输出到指定的文件(-o),格式如下:

  • 每一行对应一个基因(基因名称),每列对应一个样本的丰度值。
  • 如果某个基因在某个样本中没有出现,则该样本的丰度值为0。

代码的核心流程总结

  1. 选择比对工具:根据用户输入选择 diamondusearchblast
  2. 比对过程:使用选择的工具对序列文件进行比对,并生成比对结果。
  3. 基因丰度计算:根据比对结果和基因映射表计算每个基因在不同样本中的丰度。
  4. 随机抽样:根据用户指定的随机抽样大小,进行基因丰度的抽样计算。
  5. 输出结果:将丰度数据输出到指定的文件。

2、方法的可信度

2.1某些基因的丰度被低估

脚本通过 随机抽样RandomSampling)来平衡不同样本的序列数。虽然这有助于减少因样本大小差异造成的偏差,但随机抽样本身可能导致某些基因的丰度被低估,特别是在基因丰度分布不均的情况下。

如果丰度高的基因在抽样中未被选中,可能会导致低估。而如果抽样大小过大或过小,也会影响结果的稳定性和准确性。

2.2 重复匹配和阈值设定

脚本会统计每个基因在样本中出现的次数。如果一个基因在同一序列中被多次比对到,丰度就会被多次计数。虽然脚本通过哈希表来避免重复计数(使用 $hit{$items[0]} 进行判断),但这个策略可能无法完全消除所有潜在的重复匹配。

-e 值(期望值)和 -k 值(显示的比对数)等参数的设置对比对结果也有影响,不恰当的参数设置可能会导致一些低质量的比对结果被错误地计入丰度。

3、总结

这种计算方法在数据质量较好和参数设置合理的情况下可以提供有价值的丰度估算,但不能期望其绝对准确性,尤其在存在复杂样本和基因多样性的情况下。

### SCycDB 数据库介绍 SCycDB 是一个专注于微生物群落功能预测和分析的数据库平台。它通过整合多种生物信息学工具和算法,提供了一种高效的方式来研究宏基因组数据中的代谢通路及其相对丰度[^1]。 #### 主要特点 - **直接获得丰度**:类似于 NCycDB 的设计思路,SCycDB 提供了基于已知参考基因组的功能模块丰度估计方法。 - **多维度数据分析**:支持从物种水平到功能水平的数据解析,帮助研究人员更全面地理解样本间的差异。 - **用户友好型界面**:无论是初学者还是高级用户都可以轻松上手并完成复杂的生信任务。 --- ### 功能概述 SCycDB 的核心功能围绕以下几个方面展开: 1. **丰度计算** - 基于 KEGG Orthology (KO) 和其他功能性注释体系来推断特定酶或蛋白质家族的存在概率以及它们在整个生态系统内的分布情况。 2. **路径重建** - 利用先进的网络建模技术重现可能存在的化学反应链,并评估这些链条对于整体能量流动的重要性程度。 3. **比较元基因组学** - 支持跨多个样品间的关键指标对比分析,从而揭示不同环境条件下微生物群体结构变化规律。 4. **可视化展示** - 配备强大的图形化组件使得复杂的结果能够被直观呈现出来,便于进一步解读与分享发现成果。 --- ### 下载指南 为了访问 SCycDB 及其关联资源,请按照如下指示操作: 1. 访问官方网站链接(假设地址为 http://www.scycdb.org),注册账号后登录进入个人中心页面; 2. 在导航栏找到 “Download” 菜单项点击打开子菜单列表; 3. 根据需求选择合适的版本下载安装包或者仅导出所需部分数据集即可;注意某些特殊权限受限内容需额外申请审批流程才能解锁完全使用权限[^2]。 --- ### 使用教程 以下是关于如何有效利用该系统的简明指导说明: #### 准备工作 确保本地计算机已经配置好必要的依赖软件环境比如 Python >= 3.6, Perl 等编程语言运行解释器还有像 seqkit 这样的第三方辅助程序插件。 ```bash # 安装 SeqKit 工具 pip install seqkit --upgrade ``` #### 导入原始测序文件 将 FASTA 或者 FASTQ 类型的目标序列上传至服务器端指定目录位置等待后续处理阶段调取使用。 ```python import os from Bio import SeqIO def count_sequences(fasta_file): """统计输入fasta文件里的总条数""" records = list(SeqIO.parse(open(fasta_file), 'fasta')) return len(records) if __name__ == "__main__": num_seqs = count_sequences("example.fasta") print(f"There are {num_seqs} sequences in the file.") ``` #### 执行主要分析步骤 启动内置脚本执行一系列预定义好的标准化作业流直至产出最终报告文档为止。 ```sh scycdb_pipeline.sh input_dir output_dir parameters.conf ``` 其中 `parameters.conf` 文件包含了所有自定义选项设置详情表单记录项。 ---
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