GWAS数据分析脚本集最佳实践指南

GWAS数据分析脚本集最佳实践指南

gwas_scripts Codebook from my GWAS cookbook gwas_scripts 项目地址: https://gitcode.com/gh_mirrors/gw/gwas_scripts

项目介绍

gwas_scripts 是一个开源项目,包含了进行基因组关联研究(GWAS)的一系列脚本。这些脚本主要使用 PLINK、R 和 IMPUTE 等工具,为研究者提供从质量控制、基因型填充到关联分析的全流程解决方案。本项目由 Coleman 等人开发,并在 Briefings in Functional Genomics 发表相关论文。

项目快速启动

首先,确保您的系统环境满足以下要求:

  • UNIX 类操作系统(如 Linux 或 macOS)
  • PLINK2
  • R
  • EIGENSOFT
  • IMPUTE

以下是一个快速启动的示例代码:

# 定义项目文件和软件路径
printf "root=/path/to/rootname
pheno=/path/to/external_pheno.phe
covar=/path/to/covariates.cov
genders=/path/to/external_genders.txt
names=/path/to/external_individual_names.txt
keeps=/path/to/samples_to_keep.txt
excludes=/path/to/samples_to_exclude.txt
insnps=/path/to/SNPs_to_keep.txt
outsnps=/path/to/SNPs_to_exclude.txt
plink=/path/to/plink2
R=/path/to/R" > Config.conf

# 更新样本名称
$plink \
--bfile $root \
--update-ids $names \
--make-bed \
--out $root.updated_names

# 选择分析样本
$plink \
--bfile $root.updated_names \
--keep $keeps \
--make-bed \
--out $root.kept_names

# 筛选常见SNPs
$plink \
--bfile $root.kept_names \
--maf 0.01 \
--make-bed \
--out $root.common

确保替换上述脚本中的 /path/to/rootname 为您的实际路径和文件名。

应用案例和最佳实践

质量控制

在开始分析之前,进行质量控制是至关重要的。以下是一些典型步骤:

  • 检查个体和SNP信息
  • 更新和校正表型、性别和样本名称
  • 筛选样本和SNPs
  • 过滤低频SNPs和迭代过滤低call rate的样本和SNPs

关联分析

使用校正后的数据进行关联分析:

# 在R中加载所需的库
library(plink)
library(ggplot2)

# 读取PLINK文件
plinkdata <- read.plink(rootname = "path/to/your/plink/files")

# 执行关联分析
result <- plinkdata$assoc(test = "fisher")

# 绘制曼哈顿图
manhattan <- manhattan(result)
print(manhattan)

典型生态项目

gwas_scripts 可以作为多个生态项目的一部分,例如:

  • Ricopili:Psychiatric Genomics Consortium 的管道
  • chip_gt:实现和比较 ZCall 和 Opticall 结果的工具
  • GWAS Catalog:收集和整理GWAS研究结果的数据库

通过整合这些资源,研究人员可以构建一个更加强大和完善的GWAS分析流程。

gwas_scripts Codebook from my GWAS cookbook gwas_scripts 项目地址: https://gitcode.com/gh_mirrors/gw/gwas_scripts

创作声明:本文部分内容由AI辅助生成(AIGC),仅供参考

### pQTL 的定义与意义 蛋白定量性状位点 (protein Quantitative Trait Loci, pQTL) 是指影响蛋白质表达量的遗传变异位置。这些变异通常通过全基因组关联研究 (GWAS) 进行识别,能够揭示特定蛋白质水平变化背后的遗传机制[^1]。 --- ### 学习资源推荐 #### 1. **理论基础** - 可以参考文献中的 GWAS 数据分析方法以及其应用案例来理解 pQTL 的基本原理。例如,在 INTERVAL 队列中使用的个体水平遗传和蛋白质组学数据提供了丰富的背景支持[^2]。 - 关于如何解读 GWAS 结果并将其应用于 pQTL 研究的具体流程可以参阅相关领域综述文章或书籍章节。 #### 2. **在线课程与文档** - GitHub 上有许多开源项目专注于生物统计绘图工具开发,比如 Yongxin Liu 提供的 MicrobiomeStatPlot 工具包就包含了可视化部分如曼哈顿图绘制等功能[^1]。虽然该项目主要针对微生物群落数据分析,但它所涉及的一些概念和技术同样适用于其他类型的 QTL 分析。 #### 3. **实际操作指南** 对于希望深入实践的人来说,可以从以下几个方面入手: - 使用 R 软件包 `MatrixEQTL` 来执行 eQTL/pQTL 分析是一个不错的选择。下面给出一段简单的代码示例展示如何加载必要库并运行初步测试: ```r library(MatrixEQTL) # 加载基因型矩阵(假设为 SNP 数据) genotype_matrix <- read.table("path/to/genotypes.txt", header=TRUE, row.names=1) # 加载表型向量(这里是蛋白质浓度测量值) phenotype_vector <- as.numeric(readLines("path/to/protein_levels.txt")) # 设置参数 snp_pval_threshold <- 1e-5 cis_distance_kb <- 1000 # 执行 Cis-pQTL 分析 results_cis <- Matrix_eQTL_test(genotype_matrix, phenotype_vector, snp_pval_threshold=snp_pval_threshold, cis_dist=cis_distance_kb)$all_results print(head(results_cis)) ``` 此脚本展示了如何利用已有的基因型信息寻找可能存在的近端调控元件即所谓的Cis-pQTL候选者们[^1]。 另外值得注意的是,当处理大规模公共数据库时,熟悉 FTP 下载命令或者 API 接口调用技巧将会非常有帮助。例如访问 EBI GWAS Directory 中存储的各种疾病相关的汇总级统计数据文件就需要掌握一定的编程能力以便高效获取所需材料[^2]。 --- ###
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