蛋白的重组表达是指将外源基因克隆在含有特定启动子的表达载体中,让其在大肠杆菌中在IPTG的诱导下过量表达。不同蛋白适合不同的表达体系,包括表达载体、宿主菌株、诱导条件。
表达载体的选择:
融合蛋白表达载体的选择受多因素限制,首先载体上要有合适的多克隆位点。其次需要根据后续的蛋白纯化条件选择合适的融合标签,常用的融合标签有His.Tag、GST.Tag、Nus.Tag和Trx.Tag。其中His标签比较小,对蛋白的结构性质没有明显的影响,亲和层析纯化后可以不作标签切除的处理;但是像GST这样稍大的标签在后续过程中需要用专一性酶切除。在许多实际应用中常希望表达可溶的活性蛋白,特定目标蛋白的溶解性取决于多种因素,包括载体,其中带有GST.Tag的载体可以增加融合蛋白的溶解性。
宿主菌株的选择:
相同的蛋白在不同的宿主中表达状态可能会有所不同,目前应用最广泛的是BL21系列宿主。而从BL21衍生而来的Rosetta宿主菌可增强带有大肠杆菌稀有密码子的真核蛋白的表达。该菌株通过一个相容性氯霉素抗性质粒补充密码子AUA、AGG、AGA、CUA、CCC和GGA的tRNAs。这样Rosetta菌株提供了“万能”的翻译,从而避免因大肠杆菌密码子使用频率导致的表达限制。BL21(DE3)宿主有利于包涵体形成。
诱导条件:
诱导条件的改变同样影响蛋白的表达,一般实际应用中需要的大多是可溶性蛋白,这就需要摸索最适的诱导温度。大部分蛋白在低温(15~25℃)过夜诱导的条件下合成的可溶性蛋白的比例会比较大。此外诱导剂的浓度对蛋白的表达状态也是有影响的,低浓度诱导剂有利于可溶性蛋白的表达。较高的温度可能增加了蛋白质合成的速度、折叠中间体形成聚集体的速度以及疏水相互作用力,表达的蛋白质易于以包涵体的形式存在。而较高浓度的诱导剂(0.8~10mM IPTG)也能促进菌体中包涵体的形成。对于带普通T7启动子的pET重组子,终浓度为0.5mM的IPTG可以实现完全诱导,而带有T7lac启动子的载体则需要终浓度为0.8mM的IPTG才能完全诱导。
在一些DE3宿主菌中通过调节IPTG的浓度可以改变蛋白表达的水平,一般在进行蛋白的大量表达之前会进行小量的测试诱导,确定最佳IPTG浓度和最适的的诱导温度使目的蛋白达到最佳的活性和溶解性。

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