56、使用从1到10的多个k值运行RUVSeq,并比较每次RUVSeq运行的归一化计数得到的主成分分析(PCA)图。
通常,运行时需依次设置 k 值从 1 到 10,对每次运行得到的归一化计数数据使用 plotPCA 函数绘制 PCA 图,然后从主成分的解释方差比例、样本的聚类情况等方面进行对比。若主成分解释方差比例高,且病例组和对照组样本分离明显,说明该 k 值下的归一化效果较好。
57、使用 sva 包发现不需要的变异来源,并使用 sva 的输出变量重新进行差异表达分析,然后将结果与使用 RUVSeq 校正的归一化计数的 DESeq2 结果进行比较。
一般而言,需先使用 sva 包估计潜在变异源,将其整合到 DESeq2 的设计公式中重新分析,再将结果与使用 RUVSeq 校正归一化计数的 DESeq2 结果对比,可从差异表达基因数量、基因重叠情况、统计指标等方面进行比较。
58、对所有可用的ChIP和Input数据集应用片段大小估计程序。
首先,从 compGenomRData 包中获取数据集,路径为:
data_path = system.file('extdata/chip-seq', package='compGenomRData')
并列出数据集:
chip_files = list.files(data_path, full.names=TRUE)
然后,针对每个数据集,使用合适的工具或方法进行片段大小估计,可使用生物信息学工具如 MACS2 等进行操作。
59、使用GViz可视化CTCF、SMC3和ZNF143的图谱。
首先加载必要的包,然后定义基因组轴轨道,将信号转换为基因组范围并定义信号轨道
RUVSeq与PCA分析比较

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