ggplot2颜色不生效?90%的人都忽略了这3个scale_fill_manual关键细节

第一章:ggplot2颜色映射的常见误区与核心机制

在使用 ggplot2 进行数据可视化时,颜色映射(color mapping)是增强图表表达力的重要手段。然而,许多用户在实际操作中常陷入一些典型误区,例如将离散变量误用连续色阶,或未正确理解 aes() 中 color 与 fill 的作用差异。

误解 discrete 与 continuous 色阶的应用场景

当分类变量被错误地映射到连续颜色梯度时,图形不仅失去可读性,还可能误导读者。正确的做法是根据变量类型选择合适的标度函数:
# 正确示例:离散变量使用离散颜色
library(ggplot2)
ggplot(mtcars, aes(x = wt, y = mpg, color = factor(cyl))) +
  geom_point() +
  scale_color_brewer(type = "qual", palette = "Set1")
# 使用 factor() 明确指定为分类变量,并选用定性调色板

理解 aes() 内 color 与 fill 的语义区别

color 控制几何对象的边框颜色(如点、线),而 fill 控制填充区域(如柱状图、密度图内部)。若混淆二者,可能导致颜色无法正常显示。
  • geom_point() 使用 color 设置点的颜色
  • geom_bar() 或 geom_histogram() 默认使用 fill 填充柱体
  • 若未在 aes() 中正确绑定变量,颜色映射将不会生效

ggplot2 颜色映射机制流程图

graph TD A[数据变量] --> B{变量类型} B -->|离散| C[应用 scale_color_discrete()] B -->|连续| D[应用 scale_color_continuous()] C --> E[生成分类色板] D --> F[生成渐变色带] E --> G[渲染图形元素] F --> G
几何类型颜色属性推荐调色板函数
geom_pointcolorscale_color_brewer(type = "qual")
geom_barfillscale_fill_viridis_d()
geom_densityfillscale_fill_gradient(low, high)

第二章:scale_fill_manual基础原理与正确用法

2.1 理解fill美学映射与数据因子水平的关系

在ggplot2等可视化系统中,`fill`美学用于定义图形元素(如柱状图、区域图)内部的颜色填充。该映射不仅影响视觉表现,更深层地关联着分类变量(因子)的水平结构。
因子水平与颜色映射的对应机制
当`fill`映射至一个因子变量时,系统会自动根据因子的水平数量分配调色板中的颜色。水平的顺序直接影响颜色分布,可通过`factor()`重新排序以控制视觉优先级。
  • 因子水平决定颜色种类数
  • 未指定调色板时使用默认色系
  • 缺失值或NA水平需单独处理
ggplot(data, aes(x = category, fill = group)) + 
  geom_bar() +
  scale_fill_brewer(palette = "Set2")
上述代码中,`fill = group`将分组变量映射到填充色,`scale_fill_brewer`指定ColorBrewer调色板。颜色自动匹配`group`因子的水平数,确保每一类有唯一视觉标识。

2.2 手动配色的基本语法结构与参数解析

在可视化配置中,手动配色通常通过颜色映射数组或对象实现,允许开发者精确控制每个数据项的颜色表现。
基本语法结构
chart.setColor({
  palette: ['#FF5733', '#33FF57', '#3357FF'],
  mapping: {
    categoryA: '#FF5733',
    categoryB: '#33FF57'
  }
});
上述代码中,palette 定义颜色轮询序列,mapping 则为特定分类指定颜色。
核心参数说明
  • palette:颜色数组,按顺序应用于数据系列
  • mapping:键值对结构,实现类别到颜色的精准映射
  • defaultColor:未匹配时的默认颜色 fallback

2.3 颜色向量长度与分类变量级别的匹配原则

在数据可视化中,颜色向量的长度必须与分类变量的级别数精确匹配,以确保每个类别被赋予唯一的视觉表示。
匹配原则的核心逻辑
若分类变量包含 N 个唯一级别,则颜色向量也应恰好提供 N 种颜色。长度不匹配将导致颜色重复或缺失,影响图表可读性。
  • 颜色过少:系统循环使用颜色,造成不同类别颜色混淆
  • 颜色过多:部分颜色未被使用,浪费资源且易引发误解
代码示例与参数说明

# R语言 ggplot2 示例
colors <- c("red", "blue", "green")
levels <- unique(factor_data)  # 3个级别
if (length(colors) == length(levels)) {
  scale_fill_manual(values = colors)
}
上述代码验证颜色数量与因子水平一致,确保映射准确。其中 scale_fill_manual 显式指定颜色分配,避免默认调色板干扰。

2.4 使用名称化向量精确控制类别颜色分配

在数据可视化中,颜色是区分类别变量的重要视觉通道。使用名称化向量(named vector)可以显式指定每个类别的颜色映射,避免默认调色板带来的歧义。
定义名称化颜色向量
通过为因子水平命名颜色值,实现精准控制:

# 定义名称化颜色向量
color_map <- c(
  "setosa" = "#FF6347",
  "versicolor" = "#4682B4",
  "virginica" = "#32CD32"
)

# 在 ggplot 中应用
ggplot(iris, aes(x = Species, fill = Species)) +
  geom_bar() +
  scale_fill_manual(values = color_map)
上述代码中,color_map 是一个以物种名称为名称、十六进制色值为元素的向量。传入 scale_fill_manual() 后,ggplot2 将根据因子水平自动匹配对应颜色,确保每次渲染一致。
优势与应用场景
  • 保证不同图表间配色一致性
  • 符合品牌或出版物的视觉规范
  • 提升可访问性,适配色觉障碍用户

2.5 处理缺失类别或额外因子水平的边界情况

在实际建模过程中,训练集与测试集的类别空间可能不一致,导致预测阶段出现未知因子水平(unseen levels)或缺失类别。这类问题常引发模型报错或预测偏差。
常见处理策略
  • 统一因子水平:在数据预处理阶段对训练集和测试集使用相同的因子水平集合;
  • 默认值填充:将未知类别映射为“other”或均值编码;
  • 模型兼容性设计:选择支持新类别自动归并的算法(如某些树模型)。
代码示例:R语言中统一因子水平

# 定义共同因子水平
common_levels <- union(levels(train$color), levels(test$color)

# 强制转换,避免新水平
train$color <- factor(train$color, levels = common_levels)
test$color  <- factor(test$color,  levels = common_levels)

# 此时模型可安全处理所有类别
该代码确保训练与测试数据的因子结构一致,防止因水平不匹配导致的模型崩溃。其中 union 获取全集,factor(..., levels=) 显式设定可用类别。

第三章:颜色不生效的三大关键细节剖析

3.1 忽视因子水平顺序导致的颜色错位问题

在可视化分类数据时,因子(factor)的水平顺序直接影响图例与颜色映射的一致性。若未显式定义因子水平,R 或 Python 等语言会按字母序自动排序,导致视觉呈现与实际数据逻辑不符。
问题示例

# 错误做法:依赖默认因子顺序
data$level <- factor(data$severity)  # severity 取值: "High", "Medium", "Low"
plot <- ggplot(data, aes(x = level, fill = level)) + geom_bar()
上述代码中,因子水平按字母序排列为 "High", "Low", "Medium",而非逻辑顺序,造成颜色分配错乱。
解决方案
应显式设定因子水平顺序:

data$level <- factor(data$severity, levels = c("Low", "Medium", "High"))
此操作确保颜色映射符合语义层级,避免图表误导。
  • 因子顺序影响所有基于类别的颜色映射
  • 图形输出一致性依赖于数据预处理的严谨性

3.2 未命名颜色向量引发的映射混乱

在图形渲染与数据可视化系统中,颜色常以向量形式表示(如RGBA),但若未为这些颜色向量赋予语义化名称,极易导致映射错乱。
问题表现
当多个组件共享同一组无名颜色向量时,索引偏移或顺序变更会引发严重视觉偏差。例如:

colors = [(0.8, 0.2, 0.2), (0.2, 0.6, 0.8), (0.5, 0.5, 0.5)]  # 无名向量
labels = ["Error", "Info", "Warning"]
上述代码中,颜色与标签间依赖位置隐式关联,一旦colors顺序调整,映射即失效。
解决方案
采用命名元组或字典显式绑定语义:

from collections import namedtuple
Color = namedtuple('Color', ['r', 'g', 'b', 'name'])
palette = [
    Color(0.8, 0.2, 0.2, 'error'),
    Color(0.2, 0.6, 0.8, 'info'),
    Color(0.5, 0.5, 0.5, 'warning')
]
通过引入命名机制,颜色向量不再依赖位置索引,提升了系统的可维护性与鲁棒性。

3.3 图层中重复定义fill导致的手动设置被覆盖

在地图样式配置中,图层(layer)的绘制属性若多次声明 `fill` 类型,后定义的规则将覆盖先前的手动设置,造成视觉表现异常。
问题成因
当同一图层中存在多个 `paint` 属性块且均包含 `fill-color` 等填充设置时,渲染引擎以最后解析的为准,导致前端动态赋值失效。
示例代码
{
  "id": "polygon-layer",
  "type": "fill",
  "source": "polygon-data",
  "paint": { "fill-color": "#f00" }
}
若后续通过 setPaintProperty 修改颜色,但图层重新加载时再次应用原始样式,则新设置会被覆盖。
解决方案
  • 确保图层唯一性,避免重复注册
  • 动态样式优先通过运行时 API 统一管理
  • 使用 getPaintProperty 校验当前状态

第四章:实战案例与调试策略

4.1 构建可复现的柱状图颜色映射错误场景

在数据可视化中,颜色映射错误常导致图表语义失真。为定位此类问题,需构建可复现的测试场景。
构造测试数据集
使用确定性随机种子生成固定分布的数据,确保每次运行结果一致:
import numpy as np
import matplotlib.pyplot as plt

np.random.seed(42)
categories = ['A', 'B', 'C', 'D']
values = np.random.randint(10, 100, size=len(categories))
colors = ['red', 'blue', 'green', 'red']  # 错误:颜色未按值排序或分类映射
该代码中 colors 手动指定但未与分类逻辑对齐,易引发视觉误导。
错误表现形式
  • 相同类别显示不同颜色
  • 颜色梯度与数值趋势不一致
  • 图例与实际色块错位
通过固定数据与颜色映射关系,可稳定复现上述异常,为后续调试提供基准环境。

4.2 修复饼图中scale_fill_manual颜色错配问题

在使用ggplot2绘制饼图时,常通过scale_fill_manual()自定义颜色,但若因子水平与颜色向量顺序不一致,会导致颜色错配。
问题根源
颜色映射依赖因子水平顺序,而非数据出现顺序。当分类变量的levels未显式指定,R会按字母序自动排序。
解决方案
确保颜色向量与因子水平一一对应:

# 显式设置因子水平
data$category <- factor(data$category, levels = c("A", "B", "C"))

# 匹配顺序提供颜色
ggplot(data, aes(x = "", y = value, fill = category)) +
  geom_col() +
  scale_fill_manual(values = c("A" = "red", "B" = "blue", "C" = "green"))
上述代码中,values以命名向量形式明确指定每类颜色,避免顺序混淆。结合factor()预设levels,可彻底解决颜色错配问题。

4.3 在分面图中保持一致颜色映射的技巧

在绘制分面图(faceted plots)时,确保不同子图间颜色映射的一致性对数据解读至关重要。若颜色标度不统一,相同数值可能对应不同颜色,导致误读。
共享颜色标度的实现
使用 Matplotlib 或 Seaborn 时,应显式指定全局归一化范围:
# 固定颜色映射范围
norm = plt.Normalize(vmin=data['value'].min(), vmax=data['value'].max())
for ax, (name, group) in zip(axes, data.groupby('category')):
    im = ax.scatter(group['x'], group['y'], c=group['value'], cmap='viridis', norm=norm)
此代码通过 norm 参数强制所有子图使用统一的最小最大值,确保颜色一致性。
颜色映射最佳实践
  • 避免使用过多类别色,优先选择连续色谱
  • 在图例中明确标注颜色对应的数值范围
  • 使用 cbar=True 在合适位置添加公共颜色条

4.4 结合levels和drop参数优化因子处理流程

在因子分析中,合理使用 `levels` 和 `drop` 参数可显著提升数据预处理效率。通过显式定义因子水平,能够避免因缺失值或异常标签导致的模型训练偏差。
参数协同工作机制
`levels` 用于指定因子变量的合法取值集合,而 `drop` 参数则控制默认省略的基准水平。二者结合可精简哑变量生成过程。
参数作用
levels限定因子可能的取值范围
drop设定参考组,避免多重共线性

import pandas as pd
# 定义有序因子并指定省略水平
factor = pd.Categorical(['low', 'medium', 'high'], 
                        categories=['low', 'medium', 'high'], 
                        ordered=True)
X = pd.get_dummies(factor, drop_first=True)  # drop参数自动省略首水平
上述代码中,`drop_first=True` 自动排除第一个level作为基准组,配合预设的categories顺序,确保模型矩阵满秩且解释清晰。

第五章:总结与高效使用scale_fill_manual的最佳实践

定义明确的调色方案并集中管理
为提升代码可维护性,建议将颜色映射集中定义为命名向量。例如,在绘制多图表项目中统一品牌配色:

brand_colors <- c("Product A" = "#E15759", "Product B" = "#4E79A7", 
                  "Product C" = "#F28E2B")

ggplot(data, aes(x = category, y = sales, fill = product)) +
  geom_col() +
  scale_fill_manual(values = brand_colors)
确保图例与视觉一致性的对齐
手动填充颜色时,必须保证图例标签顺序与数据因子水平一致,避免误导。若因子未预设级别,R会按字母顺序排序,可能导致颜色错位。
  • 使用 factor() 显式设定分类变量顺序
  • scale_fill_manual() 中提供完整值向量,避免默认回退
  • 配合 labels 参数自定义图例文本
应对缺失类别的稳健策略
当子集绘图导致某些分类缺失时,仍应传递完整颜色映射,防止后续图表颜色漂移。可封装为函数复用:

apply_colors <- function(data) {
  levels_needed <- c("Low", "Medium", "High")
  data$category <- factor(data$category, levels = levels_needed)
  return(scale_fill_manual(values = c("Low" = "green", "Medium" = "orange", 
                                      "High" = "red")))
}
结合主题系统实现专业呈现
搭配 theme_minimal() 或自定义主题,突出数据色彩主体。避免背景干扰,提升可读性。
场景推荐做法
报告展示使用公司标准色 + 固定因子顺序
学术出版符合期刊调色规范,提供灰度兼容性
交互仪表板预留高对比色以便区分相邻区域
# 加载必要的库 library(cowplot) library(ggplot2) library(dplyr) library(tidyr) # 读取数据 df <- read.csv(&#39;rscu_all.csv&#39;, header = F) # 定义颜色 base_colors <- c(&#39;#8ECFC9&#39;,&#39;#FFBE7A&#39;,&#39;#FA7F6F&#39;,&#39;#82B0D2&#39;,&#39;#BEB8DC&#39;,&#39;#E7DAD2&#39;) # 数据预处理:按氨基酸(V2)分组,转长数据区分物种 df_processed <- df %>% # 按氨基酸(V2)分组(同一氨基酸的密码子堆积) group_by(V2) %>% # 按物种1的RSCU(V3)降序排序,确保两物种堆积顺序一致 arrange(desc(V3), .by_group = TRUE) %>% mutate(sort_order = row_number()) %>% # 密码子索引(控制堆积顺序) ungroup() %>% # 宽数据转长数据:将V3(物种1)和V4(物种2)转为“物种-值”对 pivot_longer( cols = c(V3, V4), # 要转换的列(两个物种的RSCU值) names_to = "Species", # 新列:物种标识(V3/V4) values_to = "RSCU" # 新列:RSCU数值 ) %>% # 将V3/V4转换为物种名称(Species1/Species2) mutate(Species = ifelse(Species == "V3", "Species1", "Species2")) %>% # 计算堆积块的中点位置(用于标签居中) group_by(V2, Species) %>% arrange(sort_order, .by_group = TRUE) %>% # 强制按排序位置累积 mutate( cumsum_RSCU = cumsum(RSCU), # 堆积高度累积值(顶部位置) mid_y = cumsum_RSCU - RSCU/2 # 堆积块中点(标签y坐标) ) %>% ungroup() df_processed %>% filter(V2 == "Ala", Species == "Species1") %>% select(V1, V5) # 若V5有4个不同值(如4.5、5、5.5、6),则会拆分group # 绘制双物种并列堆积柱状图 p_dual_stack <- ggplot(df_processed, aes(x = V2, y = RSCU,group=interaction(Species, V2),fill = as.character(V5), color=Species))+ # 堆积柱状图:按密码子(V1)填充,双物种并列 geom_col( position = position_dodge( width = 0.7, # 物种间并列间距(大于柱子宽度,避免重叠) preserve = "single" ), alpha = 0.8, width = 0.6, # 单个堆积柱的宽度 size = 0.5 ) + # 颜色配置 scale_fill_manual(values = base_colors) + scale_color_manual( values = c("Species1" = "black", "Species2" = "black"), # V3=黑,V4=深红 name = "none" # 图例名称(可选,说明框线色含义) )+ # y轴设置 scale_y_continuous( breaks = seq(0, ceiling(max(df_processed$cumsum_RSCU)), 1), limits = c(0, max(df_processed$cumsum_RSCU) + 0.5), # 基于累积值设置上限 expand = c(0, 0), name = "RSCU Value" ) + # 主题优化 theme_bw() + theme( axis.text.x = element_text(angle = 0, hjust = 0.5, size = 10), # 氨基酸标签旋转 axis.title.x = element_blank(), # x轴为氨基酸(V2),无需额外标题 legend.position = "none", # 若密码子太多,可隐藏图例 panel.grid = element_blank() ) + labs(fill = "Codon") # 图例标题(若显示图例) # 绘制文字标签图 p_labels <- ggplot(data = df_processed, mapping = aes(x = V2, y = V5, fill = as.character(V5))) + geom_label(mapping = aes(label = V1), size = 4) + theme_minimal() + ylim(3.4, 6.1) + theme(legend.position = &#39;none&#39;, axis.title = element_blank(), axis.text = element_blank(), panel.grid = element_blank()) + scale_fill_manual(values = base_colors) # 组合图形,将p_combined和p_labels上下组合 plot_combined <- plot_grid(p_dual_stack, p_labels, ncol = 1, align = &#39;v&#39;, axis = &#39;tblr&#39;, rel_heights = c(1, 0.3)) print(plot_combined) # 验证堆积效果:查看Ala的堆积高度是否与累积值一致 test_stack <- df_processed %>% filter(V2 == "Ala") %>% select(V2, V1, Species, RSCU, cumsum_RSCU) %>% arrange(Species, desc(cumsum_RSCU)) # 按累积值降序,看最大累积是否=4 print(test_stack) 检查一下上述代码,分析为什么会出现图中堆积块高度和y轴不一致的情况
10-29
library(ggplot2) library(reshape2) library(ggsci) #导入文件"ImmuCellAI_abundance_result" inputFile <- ImmuCellAI_abundance_result outFile="vioplot.pdf" setwd("/Volumes/芦苇常用/DPN学习/2.免疫浸润/immue_analysis") #读取输入文件 rt=read.table("/Volumes/芦苇常用/DPN学习/2.免疫浸润/immuAI/ImmuCellAI_abundance_result.txt", header=T,sep="\t",check.names=F,row.names=1) rt <- rt[,-26] x=colnames(rt)[1] colnames(rt)[1]="Type" # 初始化向量存储原始P值和显著性标记 raw_p_values <- numeric(0) # 用于收集所有免疫细胞的原始P值 immune_cellSig <- c("") # 初始化显著性标记向量,第一列为空字符串(非免疫细胞列) # 循环处理每个免疫细胞列(从第2列开始) for(immune_cell in colnames(rt)[2:ncol(rt)]) { # 提取当前免疫细胞的数据和分组信息 rt1 <- rt[, c(immune_cell, "Type")] colnames(rt1) <- c("relative_abundance", "Type") p <- 1 # 默认P值为1 # 根据分组数量选择检验方法 if(length(levels(factor(rt1$Type))) > 2) { test <- kruskal.test(relative_abundance ~ Type, data = rt1) p <- test$p.value } else { test <- wilcox.test(relative_abundance ~ Type, data = rt1) p <- test$p.value } # 存储原始P值(不立即生成标记) raw_p_values <- c(raw_p_values, p) } # 应用FDR矫正(使用Benjamini-Hochberg方法) adj_p_values <- p.adjust(raw_p_values, method = "fdr") # 校正后P值(q值) # 基于校正后P值生成显著性标记 for(i in 1:length(adj_p_values)) { p_adj <- adj_p_values[i] Sig <- ifelse(p_adj < 0.001, "***", ifelse(p_adj < 0.01, "**", ifelse(p_adj < 0.05, "*", ""))) immune_cellSig <- c(immune_cellSig, Sig) # 添加到标记向量,确保与列顺序匹配 } # 更新列名:添加显著性标记 colnames(rt) <- paste0(colnames(rt), immune_cellSig) #把数据转换成ggplot2文件 data=melt(rt,id.vars=c("Type")) colnames(data)=c("Type","immune_cell","relative_abundance") mycolors <- c("#0055AA", "#C40003", "#4AA329") #绘制 p1=ggplot(data,aes(x=Type,y=relative_abundance,fill=Type))+ guides(fill=guide_legend(title=x))+ labs(x = x, y = "Immune cell abundance")+ geom_violin()+ geom_boxplot(width=0.7,position=position_dodge(1.0))+ facet_wrap(~immune_cell,nrow =2)+ theme_bw()+ theme(axis.text.x = element_text(angle = 45, hjust = 1, size = 13), axis.title.y = element_text(size = 14), # 纵坐标标题字体大小 axis.text.y = element_text(size = 12), # 纵坐标刻度标签字体大小)+ strip.text = element_text(size = 12), scale_fill_manual(values = mycolors)) # 使用AAAS期刊的配色方案 #出图 # 保存优化后的图形 #ggsave("vioplot.svg", plot = p1, width = 27, height =12) pdf(file=outFile, width=18, height=12) print(p1) dev.off() #把数据转换成ggplot2文件 #差异分析 #绘制 #输出 getwd() 检查一下这个代码,为什么做出来的图颜色跟指定的不一样,而且变换了颜色也只有固定的三种颜色
10-06
mp_summary <- mp_summary %>% # 确保Origin和Treatment为因子 mutate( Origin = factor(Origin, levels = origin_levels), Treatment = factor(Treatment, levels = c("NT", "T", "NA")), # 含NA水平 # 创建Origin-Treatment组合键 Origin_Treatment = factor( paste(Origin, Treatment, sep = "-"), # 按生物学顺序排序组合 levels = c( outer(origin_levels, c("NT", "T", "NA"), paste, sep = "-") # 含所有可能组合 ) ) ) create_spacer_rows <- function(data) { data %>% group_by(Origin) %>% group_modify(~ bind_rows(.x, tibble( Treatment = NA, mp_type = NA, mean_prop = 0, normalized_prop = 0, # 关键:添加独特间隔标识,不影响原始分组 Origin_Treatment = paste0(.y$Origin, "-spacer") # 使用连字符避免与有效组冲突 ))) %>% ungroup() %>% # 确保间隔行排在对应Origin组之后 mutate( Origin_Treatment = factor(Origin_Treatment, levels = c(levels(data$Origin_Treatment), paste0(origin_levels, "-spacer")) ) ) } mp_summary_with_spacer <- create_spacer_rows(mp_summary) ggplot(mp_summary_with_spacer, aes(x = Origin_Treatment, y = normalized_prop, fill = mp_type)) + geom_col(position = "stack", width = 0.8) + # 核心修正:将间隔行标签显示为空 scale_x_discrete( labels = function(x) ifelse(grepl("-spacer$", x), "", x), # 匹配间隔行标识并设为空 drop = FALSE # 保留所有因子水平(括间隔行) ) + # 其他参数保持不变 scale_fill_manual(values = mp_color_vector, breaks = names(mp_code_to_name), labels = mp_code_to_name, na.value = NA) + scale_y_continuous(labels = percent_format(accuracy = 1), expand = c(0, 0), limits = c(0, 1.05)) + labs(title = "不同Origin-Treatment组的MP类型比例分布(修正间隔行)", x = "组织来源-治疗状态", y = "占比") + theme_minimal() + theme( axis.text.x = element_text(angle = 45, hjust = 1, size = 8), legend.position = "bottom", plot.title = element_text(hjust = 0.5) ) 没有报错但是为什么没有柱状图显示?只有坐标等,没有颜色和柱状图,所有定义都完成了
11-16
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